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技術(shù)(Technology)
AOM藻類熒光在線監(jiān)測系統(tǒng)

時間:2018-11-19

作者:易科泰

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簡介:

 

AOM藻類熒光在線監(jiān)測系統(tǒng)

 

AOM藻類熒光在線監(jiān)測系統(tǒng)(Algal Online Monitor)為超高靈敏度藻類在線測量監(jiān)測儀器。本儀器具有超高靈敏度,可監(jiān)測葉綠素濃度極低的水體(最低檢測限30ng/L);而且具有廣譜生物檢測功能,可以對藍藻、綠藻、硅藻及褐藻等進行測量。測量的葉綠素熒光參數(shù)包括Ft、QY及OJIP曲線等。測量OJIP曲線可以得到F40μs-F1s的葉綠素熒光曲線面積(Fix Area),這一參數(shù)進行校準后可以反映水體中藻類濃度的真實值。本儀器可廣泛應(yīng)用于飲用水在線監(jiān)測及河流、湖泊、海洋藻類測量監(jiān)測和研究。

 

 

儀器便攜性能強,可用于野外和實驗室研究,也可加裝防水機箱進行野外長期監(jiān)測,并可通過GPRS信號實現(xiàn)儀器的遠程設(shè)置和數(shù)據(jù)的無線傳輸。隨機配備的軟件FluorPen,可以實時在線控制儀器并讀取儀器內(nèi)部存儲數(shù)據(jù),圖形化顯示OJIP曲線,數(shù)據(jù)能保存為Excel文件。

工作原理

  通過潛水泵將監(jiān)測的水體抽到儀器主機中,利用調(diào)制式熒光測量技術(shù),采用LED光源,通過儀器內(nèi)置的給光方案自動測量并計算葉綠素熒光的各種參數(shù)。

 

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技術(shù)參數(shù)

l   測量程序:Ft、QY、OJIP-Fix Area

l   檢測限:30 ng Chl/L,藻類—10cells/ml,藍藻(藍細菌)—100cells/ml

l   光化光:0-3000 μmol(photons)/m2.s可調(diào)

l   飽和光0-3000 μmol(photons)/m2.s可調(diào)

l   測量光源:兩組光源可選其一,光強度可調(diào)

1)455nm藍光和630nm紅光

image.png2)455nm藍光和590nm棕色光

l   光波探測器光電二極管,667nm-750nm濾波器

l   樣品室:流通式石英玻璃管

l   測量間隔:0-720min可調(diào)

l   軟件適用系統(tǒng):Win2000,WinXP,Win7

l   數(shù)據(jù)通訊串口RS232、RS485

l   顯示:2行16字符LC顯示屏

l   數(shù)據(jù)存貯:內(nèi)置數(shù)采,4Mb內(nèi)存,可存儲10萬個數(shù)據(jù)(大約300個OJIP曲線)

l   防水性能:IP65,可選配加裝高性能防水機箱

l   操作條件:溫度:0-45 oC;相對濕度:0-95 %非冷凝

l   主機尺寸:20cm x 23cm x 11cm,重量3.4kg

l   供電方式:直流供電系統(tǒng)、交流供電系統(tǒng)、太陽能供電系統(tǒng),三者可選其一。

l   安裝條件:可安裝到船舶、大型浮標、高腳屋或棧橋上。

l   重量:3.4kg

操作軟件與實驗結(jié)果

 

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應(yīng)用案例


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使用590nm測量光測量不同濃度杜氏鹽藻(Dunaliella salina)獲得的OJIP曲線。

 

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使用590nm測量光連續(xù)監(jiān)測不同濃度杜氏鹽藻(Dunaliella salina)OJIP曲線獲得的Fix Area

 

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Fix Area與杜氏鹽藻(Dunaliella salina)葉綠素濃度的線性校準曲線,通過鏡檢等方法獲得鹽藻濃度的真實值,即可通過監(jiān)測Fix Area的實時變化獲得鹽藻濃度的真實變化值。

產(chǎn)地:歐洲

參考文獻:

1. High turnover rates of aerobic anoxygenic phototrophs in European freshwater lakes, Cepáková Z, et al. 2016, Environmental Microbiology, 18: 5063–5071

2. Monitoring of microalgal cultivations with on-line, flow-through microscopy, I Havlik, et al. 2013, Algal Research, 2(3): 253-257

3. On-line monitoring of large cultivations of microalgae and cyanobacteria, I Havlik, et al. 2013, Trends in biotechnology, 31(7): 406-414

4. Metabolic activity and membrane integrity changes in Microcystis aeruginosa–new findings on hydrogen peroxide toxicity in cyanobacteria, P Mikula, et al. 2012, European Journal of Phycology, 47(3): 195-206

5. Utilization of multiple organisms in a proposed early-warning biomonitoring system for real-time detection of contaminants: preliminary results and modeling, Maradona A. et al. 2012, Journal of Hazardous Materials, 219-220: 95-102

6. High abundances of aerobic anoxygenic phototrophs in saline steppe lakes, Medová H. et al. 2011, FEMS Microbiology Ecology, 76(2): 393-400

7. Photodynamic impact of hydrogen peroxide – complex assessment of algicidal agent on Microcystis aeruginosa physiology, Mikula P. et al. 2010, Ecotoxicological Assessment Of Methods For The Management Of Eutrophication-Associated Features, Chapter 10, 125-144

8. Spectral fluorometric characterization of phytoplankton community composition using the Algae Online Analyser, T L. Richardson. et al. 2010, Water Research, 44(8), 2461–2472

 

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